El género Giardia comprende múltiples especies de protozoos flagelados que no pueden distinguirse morfológicamente. No todas las especies de Giardia causan enfermedades en los seres humanos.
Análisis genéticos recientes han revelado dos ensamblajes genotípicos principales en personas. El ensamblaje A (Giardia duodenalis) se ha encontrado en humanos infectados y en muchos otros mamíferos, incluidos perros y gatos.
El ensamblaje B (Giardia enterica) se ha encontrado en humanos y perros infectados, pero no en gatos.
Existen genotipos específicos de Giardia que comúnmente infectan perros (Giardia canis; Ensamblajes C y D) y gatos (Giardia felis; Ensamblaje F), y estos se identifican con poca frecuencia en las personas.
La prevalencia de infección por Giardia varían según el área estudiada, el método de diagnóstico utilizado y el estado de salud del animal; sin embargo, las tasas de prevalencia son comúnmente del 5% al 10% en perros o gatos sanos o clínicamente enfermos.
Giardia spp, se encuentra en la superficie de los enterocitos, y las concentraciones más altas de los organismos se encuentran en el duodeno de los perros y el íleon en los gatos.
Como los organismos están en la superficie, es poco probable que la patogénesis sea secundaria al daño celular directo.
Las infecciones por Giardia incluyen la producción de toxinas, la alteración de la flora normal, la inducción de EII, la inhibición de la función enzimática de los enterocitos normales, la disminución de las microvellosidades y la dismotilidad.
Hay muchos perros y gatos infectados subclínicamente, por lo que Giardia no siempre es un patógeno primario efectivo.
Pueden existir cepas que varían en su patogenicidad u otros factores del huésped que pueden desempeñar un papel importante para determinar si se desarrollará la enfermedad.
La presencia de enfermedades inmunosupresoras o coinfecciones pueden potenciar el desarrollo de signos clínicos de enfermedad.
Muchos perros y gatos tienen infección subclínica, cuando se produce una enfermedad clínica, la diarrea es de apariencia suave a acuosa y con frecuencia tiene moco adherente.
Entre las manifestaciones de la enfermedad aguda se encuentran: diarrea acuosa o pastosa, esteatorrea (evacuaciones grasosas, generalmente explosivas y fétidas), dolor epigástrico postprandial, anorexia, distensión abdominal, flatulencia y ocasionalmente, cefalea, febrícula, manifestaciones alérgicas (artralgias, mialgias, urticaria); la enfermedad puede resolverse en unas semanas, aún sin tratamiento, pero la presencia de parasitosis crónica es un hallazgo cada vez más frecuente
La malabsorción crónica ocurre en algunos animales y la pérdida de peso puede detectarse fácilmente.
Pueden encontrarse hallazgos en el examen físico de síndromes coexistentes que pueden potenciar la giardiasis.
Las principales pruebas de diagnóstico para Giardia spp, son el examen de frotis fecal directo, preparación salina directa, flotación fecal pasiva, flotación fecal por centrífuga (el sulfato de zinc y el azúcar se usan con mayor frecuencia), IFA fecal, ELISA de antígeno fecal y ensayo de PCR fecal.
Estas pruebas se pueden usar solas o en combinación.
El frotis directo y las preparaciones salinas directas se pueden usar en la clínica para detectar la presencia de trofozoítos de Giardia spp (diarrea del intestino delgado), T. fetus (diarrea del intestino grueso) y Pentatrichomonas hominis (diarrea del intestino grueso).
Para la preparación de solución salina directa, una cantidad de heces frescas de 2 mm × 2 mm × 2 mm se mezcla a fondo con 1 gota a temperatura corporal de NaCl al 0,9% o de agua.
La superficie de las heces o el moco que recubre las heces debe utilizarse ya que los trofozoítos son los más comunes en estas áreas.
Después de la aplicación con un cubreobjetos, se evalúa el frotis en busca de organismos móviles examinándolo con un aumento de 100x. El cultivo (T. fetus), la prueba de antígeno (Giardia) o el PCR (T. fetus o Giardia) se pueden usar para distinguir entre organismos específicos si la morfología no está clara.
La flotación fecal con el sulfato de zinc o la técnica de centrifugación de azúcar (gravedad específica 1.18 a 1.20) es más óptima para la demostración de Giardia spp, y quistes que la flotación pasiva.
Aunque la sensibilidad es inferior al 100% cuando se evalúa una sola muestra, la flotación fecal sigue siendo la prueba de diagnóstico primaria de Giardia debido a la capacidad de estos ensayos para identificar muchas otras posibles coinfecciones.
Los quistes se desprenden de forma intermitente y su presencia no se correlaciona muy bien con los signos clínicos de la enfermedad.
La combinación de flotación fecal con examen de montaje húmedo en casos de diarrea o con un análisis de antígeno fecal aumentará la sensibilidad.
Además de esto, la sensibilidad de la flotación fecal aumenta a más del 90% si se examinan al menos tres muestras de heces dentro de los siguientes 5 días.
Se han evaluado varios genes para la amplificación del ADN de Giardia por PCR. Los resultados pueden variar según el gen elegido y es posible que algunos perros o gatos puedan ser genotipados como “potencialmente zoonóticos” por un gen, pero como “huésped específico con otro”.
En experimentos de algunos laboratorios, el PCR Giardia no puede amplificar el ADN de aproximadamente el 20% de las muestras que son positivas para quistes o antígenos Giardia.
En este momento, las pruebas de PCR solo se recomiendan para evaluar el ensamblaje de G. duodenalis en gatos y perros, y se recomienda el uso de genotipos multilocus.
Es probable que las sensibilidades varíen entre los diferentes aislamientos y actualmente es imposible predecir qué fármaco anti-Giardia será efectivo en un caso individual.
La infección con Giardia no parece causar inmunidad permanente y, por lo tanto, puede producirse una reinfección. El objetivo principal del tratamiento con Giardia es detener la diarrea.
Debido a que las mascotas sanas no se consideran un riesgo de salud significativo para las personas inmunocompetentes, la eliminación de la infección (que es difícil) es un objetivo secundario.
Las opciones de tratamiento actualmente disponibles o utilizadas históricamente incluyen metronidazol, tinidazol, ipronidazol, ronidazol, fenbendazol, albendazol, pirantel / prazicuantel / febantel, quinacrina, furazolidona y nitazoxanida.
Debido a que el albendazol está asociado con la supresión de la médula ósea, muchos médicos usan fenbendazol o febantel cuando se elige esa clase de medicamentos.
Si los hallazgos clínicos sugieren un sobrecrecimiento concurrente de C. perfringens, el uso de metronidazol puede estar indicado ya que este medicamento es un antibiótico con actividad contra Clostridium spp.
Si hay hallazgos clínicos que sugieren infección concurrente con un nematodo, se indica fenbendazol o febantel.
Actualmente, muchos médicos usan fenbendazol una vez al día durante 3 a 5 días como terapia inicial.
Algunos médicos recomiendan actualmente la combinación de metronidazol y fenbendazol.
Otros solo recurren a la terapia combinada si hay evidencia de una infección persistente que no se elimina con la monoterapia.
Si el primer fármaco no logra controlar la diarrea y el organismo aún se detecta en las heces, se indica un segundo fármaco de una clase alternativa.
La adición de fibra a la dieta puede ayudar a controlar los signos clínicos de giardiasis en algunos animales, esto al ayudar a suprimir el crecimiento excesivo de bacterias o al inhibir la unión del organismo a las microvellosidades intestinales.
La administración de probióticos ha sido promovida como potencialmente beneficiosa en el control de la giardiasis.
En un estudio, los perros tratados con silimarina y metronidazol tuvieron respuestas clínicas superiores a los perros tratados con metronidazol solo.
Sin embargo, en otro estudio, la administración de un probiótico disponible comercialmente no afectó el resultado de la infección por Giardia.
En un estudio, bañar al perro el último día de tratamiento fue una terapia complementaria beneficiosa.
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